Экспериментально-клиническое обоснование применения шовного материала, импрегнированного мирамистином, в условиях распространенного перитонита


Цитировать

Полный текст

Аннотация

Актуальность. В условиях распространенного перитонита частота несостоятельности кишечного шва колеблется от 5 до 15%, а нагноение операционной раны от 15% до 30%.

Цель. В эксперименте изучить течение раневого процесса в стенке кишки в условиях распространенного перитонита при использовании шовного материала импрегнированного мирамистином, а в хирургической клинике оценить влияние этого материала на частоту несостоятельности кишечного шва и нагноения операционных ран. Материалы и методы. Экспериментальное исследование проводилось на 192 крысах-самцах линии Wistar разделенных на 2 группы по 96 особей в каждой, а клиническое на20 пациентах с травматическими ранами кишечной трубки, разделенных также на 2 группы Моделирование перитонита осуществлялось путем введения в брюшную полость 10% каловой взвеси. Через 24 часа проводили лапаротомию, затем промывали брюшную полость стерильным физиологическим раствором и наносили на стенку толстой кишки рану длиной 1 см, которую в первой (контрольной) группе животных ушивали полигликолидной нитью без антибактериального покрытия, во второй – полигликолидной нитью, покрытой полимерным раствором, содержащим 20% мирамистина от массы полимера. В первой клинической группе10 пациентам раны кишечника были ушиты аналогичной нитью без лекарственного покрытия, а брюшной стенки узловыми лавсановыми швами. Во второй группе раны кишечной трубки и брюшной стенки10-пациентам ушивались нитями импрегнированными 20% мирамистином. Результаты. У животных в первой группе выраженная фаза воспаления кишечной стенки продолжалась 7 суток, стихание воспаления и начало пролиферативной фазы зарегистрировано на 14-е сутки, а ограничение кишечного шва элементами соединительной ткани – на 21-е сутки эксперимента. Во второй группе фаза воспаления продолжалось 3 дня, пролиферативная фаза заканчивалась на 7-е сутки, а ограничение кишечного шва молодой соединительный тканью с полным восстановлением архитектоники кишечной стенки– на 14-й день. В первой клинической группе несостоятельность кишечного шва развилась у 2(20%), нагноение операционной раны – у 4(40%) больных с одним летальным исходом. Во второй клинической группе несостоятельности кишечного шва, летальных исходов и нагноения операционных ран не зарегистрировано. Заключение. Применение шовного материала импрегнированного полимерным раствором, содержащим 20% мирамистина от массы полимера, в условиях перитонита патогенетически обосновано и эффективно.

Полный текст

Введение. Наиболее частыми осложнениями экстренных хирургических вмешательств на органах брюшной полости остаются несостоятельность кишечного шва и нагноение операционных ран. По данным отечественных и зарубежных авторов несостоятельность кишечного шва в условиях перитонита колеблется от 5-15%, а нагноение операционных ран от 15 до 30%. [1, 2]

Одним из способов профилактики этих осложнений является применение во время операции шовного материала с антимикробным покрытием. В России наибольшее распространение получили антимикробные покрытия с антибиотиками доксициклином, эритримицином, ципрофлоксацином, а за рубежом с триклозаном [3, 4]. Недостатками этих покрытий является быстро развивающаяся устойчивость микроорганизмов к антибиотикам. На начальном этапе применения они показывают хорошую эффективность, которая снижается прямо пропорционально к каждому году их последующей эксплуатации [5, 6]. Через 5-6 лет после начал их применения антимикробная активность снижается до нулевой отметки. Поэтому в последние годы вместо антибиотиков начали применяться покрытия шовного материала антисептиками. В отличие от антибиотиков, к ним устойчивость микроорганизмов развивается значительно медленнее.

В России в различных областях медицины нашел широкое применение отечественный антисептик мирамистин. В отличие от большинства известных антибиотиков и антисептиков к нему сохраняется чувствительность микрофлоры, так как он обладает противомикробным, противовоспалительным и местным иммуноадъювантным действием [7]. До настоящего времени шовный материал с полимерным антимикробным покрытием, содержащим мирамистин, для наложения кишечного шва и ушивания ран брюшной стенки в экстренной абдоминальной хирургии не применялся.

Цель исследования: в эксперименте изучить течение раневого процесса в условиях распространенного перитонита в стенке кишки при использовании шовного материала импрегнированного мирамистином, а в хирургической клинике оценить влияние этого материала на частоту несостоятельности кишечного шва и нагноения операционных ран.

Материалы и методы. Экспериментальное исследование проводилось на 192 крысах-самцах линии Wistar массой 250-300 гр. в условиях базы лаборатории «Экспериментальной хирургии и онкологии НИИ экспериментальной медицины» Курского государственного медицинского университета. Все манипуляции с лабораторными животными осуществляли в соответствии с принципами биоэтики, правилами лабораторной практики (GLP) и международными рекомендациями по проведению медико-биологических исследований с использованием животных (1985 г.).

 Придание антимикробной активности рассасывающейся полигликолидной нити (производство фирмы Gunze (Япония) и лавсановой нити отечественного производства осуществляли путем нанесения полимерного покрытия в два слоя, в которое вводили антимикробный препарат. Для нанесения покрытия использовали растворы поли-ε-капролактона (производство фирмы Purac (Нидерланды)) в 1,3-диоксолане, содержащие мирамистин, который также хорошо растворяется в данном растворителе. Для  покрытия использовали 2 и 10 % растворы полимера. Мирамистин вводили в покрытия в количестве  20% от массы полимера. Образцы шовного материала, участвующие в эксперименте, были предоставлены компанией ООО «Линтекс» (г. Санкт-Петербург).

Всем животным моделирование перитонита осуществлялось по методике, разработанной в клинике, путем введения в брюшную полость 10% каловой взвеси [8]. Манипуляции на животных проводились под общим обезболиванием. В качестве средства для наркоза применялся эфир. Эвтаназию проводили путем передозировки наркотического средства.

Лабораторные животные были разделены на две группы по 96 особей в каждой. В первой (контрольной) группе животных через 24 часа после введения каловой взвеси в асептических условиях проводили лапаротомию и промывание брюшной полости стерильным физиологическим раствором. Затем на воспаленную стенку толстой кишки наносили раневой дефект длиной 1см, который ушивали с помощью полигликолидной нити без антимикробного покрытия (инертной). Животным второй группы производили аналогичные манипуляции, но раневой дефект толстой кишки во второй группе ушивали полигликолидной нитью, покрытой раствором полимера, содержащим 20% мирамистина от массы полимера. На протяжении экспериментального исследования проводили динамическое наблюдение за общим состоянием животных. Из эксперимента животных выводили на 1, 3, 7,14,21 сутки после операции, путем передозировки средства для наркоза. На гистологическое исследование брались участки толстой кишки в области наложенного шва, которые подвергались исследованию по общепринятой методике, с фиксацией препаратов в нейтральном формалине, заливкой в парафин, а также окраской срезов гематоксилин-эозином и по Ван-Гизону (пикро-фуксином).

Проведен анализ лечения 20 больных с распространенным перитонитом на почве открытых или закрытых повреждений тонкой или толстой кишки. Больные были разделены на две статистически однородных группы по 10 человек в каждой.Обследование и  лечение больных проводилось в соответствии с клиническими рекомендациями Российского общества хирургов по абдоминальной хирургии. У больных первой  группы рану тонкой или толстой кишки ушивали полигликолидной нитью без антимикробного покрытия, а во второй группе полигликолидной нитью, покрытой раствором полимера, содержащим 20% мирамистина от массы полимера. В первой группе рану брюшной стенки ушивали узловыми швами лавсановыми нитями без антимикробного покрытия, а во второй – лавсановыми нитями, покрытыми раствором полимера, содержащим 20% мирамистина от массы полимера.Эффективность лечения оценивали по частоте послеоперационных осложнений.

Статистическую обработку проводили с использованием пакета Microsoft Excel 2010. Достоверность отличий между показателями групп оценивали по критерию Пирсона. Критический уровень значимости при проверке статистических гипотез в данном исследовании принимали равным 0,05.

Результаты исследования и их обсуждение.

На первые сутки эксперимента в первой группе животных в области наложения кишечного шва определялись локальные кровоизлияния, участки некроза слизистой и подслизистой оболочки, пропитывание стенки кишки фибрином. В подслизистой оболочке визуализировалось большое количество тучных клеток, находящихся в стадии дегрануляции, что свидетельствовало о расстройстве микроциркуляции в стенке кишки. Все слои кишечной трубки были инфильтрированы клетками воспалительного ряда, нейтрофилами и лимфоцитами (Рис 1А).

Во второй группе в области наложения кишечного шва воспалительный процесс был менее выражен. В непосредственной близости к шву определялись участки локального скопления лимфоцитов и нейтрофилов. В слизистой и подслизистой оболочках были признаки интерстициального отека, тучные клетки определялись в единичных случаях, выраженных признаков расстройства микроциркуляции (кровоизлияния, пропитывания фибрином) нет (Рис. 1Б). На этих сроках в обеих группах животных продолжалась фаза альтерации раневого процесса, более выраженная в первой группе.

   

                        А                                                        Б

Рисунок 1 – Микрофотография среза отдела толстой кишки на 1-е сутки после ушивания дефекта: А –  инертной полигликолидной нитью Б – полигликолидной нитью с полимерным покрытием, содержащим 20% мирамистина, Окрашено гематоксилином и эозином. Ув. ×400.

Figure 1 – Micrograph of a section of the colon on the 1st day after suturing defect: A – with an inert polyglycolide thread. B – polyglycolide thread with polymer coating, containing 20% miramistin. Stained with hematoxylin and eosin. Uv. ×400.

 

На третьи сутки эксперимента в первой группе участков кишки с кровоизлияниями и пропитыванием фибрина нет, что свидетельствовало о нормализации микроциркуляции. Однако степень воспалительного процесса оставалась на прежнем уровне – клетки воспалительного ряда инфильтрировали стенку кишки на всем протяжении. Вокруг нити шовного материала определялись инфильтраты из нейтрофилов и лимфоцитов (Рис.2А).

На этом же сроке во второй группе отмечено уменьшение площадей воспалительного инфильтрата вокруг шовного материала. В клеточном компоненте происходило уменьшение клеток воспалительного ряда и появление клеток пролиферативного ряда – фибробластов и макрофагов. Раневой процесс начал переходить в стадию пролиферации (Рис. 2Б).

 

                                   А                                                                    Б

Рисунок 2 – Микрофотография среза отдела толстой кишки на третьи сутки после ушивания дефекта: А –  инертной полигликолидной нитью, Б – полигликолидной нитью с полимерным покрытием, содержащим 20% мирамистина. Окрашено гематоксилином и эозином. Ув. ×400.

Figure 2 - Micrograph of a section of the large intestine on the 3rd day after suturing defect: A – with an inert polyglycolide thread. B – polyglycolide thread with polymer coating, containing 20% miramistin. Stained with hematoxylin and eosin. Uv. ×400.

На седьмые сутки эксперимента у животных первой группы продолжалась фаза альтерации раневого процесса. В слизистой, подслизистой и мышечной оболочках сохранялся отек, инфильтрация нейтрофилами и лимфоцитами. В области наложенного шва продолжали определяться локальные инфильтраты из клеток воспалительного ряда. Клеток фибробластического ряда не определялось. Выраженность воспалительного процесса в стенке кишки уменьшилось, но оставалась высокой (Рис. 3А).

Во второй группе вокруг наложенного кишечного шва зон нейтрофильно-лимфоцитарной инфильтрации не определялось. Клетки воспалительного ряда встречались в единичных случаях. В большом количестве в области наложенных швов определялись клетки репаративного ряда :макрофаги, полибласты и фибробласты, что свидетельствовало о переходе фазы альтерации в пролиферативную фазу (Рис. 3Б).

  

                        А                                                        Б

Рисунок 3 – Микрофотография среза отдела толстой кишки на 7-е сутки после ушивания дефекта : А – инертной полигликолидной нитью, Б – полигликолидной нитью с полимерным покрытием, содержащим 20% мирамистина. Окрашено гематоксилином и эозином. Ув. ×400.

Figure 3 - Micrograph of a section of the large intestine on the 7th day after suturing defect: A – with an inert polyglycolide thread. B – polyglycolide thread with polymer coating, containing 20% miramistin. Stained with hematoxylin and eosin. Uv. ×400.

 

На 14 сутки в первой группе на фоне снижения выраженности реактивных изменений наблюдалась  некоторая тенденция к хронизации воспалительного процесса. В стенке кишечника количество  клеток  воспалительного ряда стало снижаться. В области наложенных швов наряду с нейтрофилами и лимфоцитами появились макрофаги, полибласты и фибробласты. (Рис.4А)

Во второй группе в области наложения кишечного шва наблюдается полная сохранность архитектоники. Швы ограничены грануляционной тканью. Подслизистая, мышечная и серозная оболочки без особенностей (Рис.4Б).

 

 

                        А                                                                    Б

Рисунок 4 – Микрофотография среза отдела толстой кишки на 14-е сутки после ушивания дефекта : А – инертной полигликолидной нитью, Б – полигликолидной нитью с полимерным покрытием, содержащим 20% мирамистина. Окрашено гематоксилином и эозином. Ув. ×400.

Figure 4 - Micrograph of a section of the large intestine on the 14th day after suturing defect: A – with an inert polyglycolide thread. B – polyglycolide thread with polymer coating, containing 20% miramistin. Stained with hematoxylin and eosin. Uv. ×400.

 

На 21 сутки в первой группе в микропрепаратах стенки толстого кишечника в области наложения шва наблюдается соединительно-тканная реакция. Визуализируется утолщение серозной оболочки, ее инфильтрация лимфоцитами, разрастание соединительно-тканных волокон и большое количество между ними фибробластов. Однако продолжает сохраняться клеточная плотность подслизистых и мышечных оболочек. Среди клеток в поле зрения преобладают нерезиденты (Рис. 5А).

Во второй группе в области кишечного шва наблюдается полная сохранность архитектоники стенки кишки. Наложенные швы инкапсулированы прослойками соединительной ткани. Сохраняется круглоклеточная инфильтрация слизистой оболочки, которая характерна для данного отдела кишечника. Подслизистая, мышечная и серозная оболочки без особенностей (Рис. 5Б).

 

                                   А                                                        Б

Рисунок 5 – Микрофотография среза отдела толстой кишки на 21-е сутки после ушивания дефекта : А – инертной полигликолидной нитью, Б – полигликолидной нитью с полимерным покрытием, содержащим 20% мирамистина. Окрашено гематоксилином и эозином. Ув. ×400.

Figure 3 - Micrograph of a section of the large intestine on the 21th day after suturing defect: A – with an inert polyglycolide thread. B – polyglycolide thread with polymer coating, containing 20% miramistin. Stained with hematoxylin and eosin. Uv. ×400.

Количество послеоперационных осложнений у больных в клинических группах представлено в таблице 1.

Таблица 1. Частота послеоперационных осложнений

Table 1. Frequency of postoperative complications

Виды осложнений

Types of complications

1 группа (n=10)

1 group (n=10)

 

2 группа (n=10)

2 group (n=10)

 

Абс

Abs

 

%

Абс

Abs

 

%

Нагноение раны

Suppuration of the wound

4

40

-

-

Эвентрация

Eventration

2

20

-

-

Пнемнония

Pnemnonia

1

10

1

10

Несостоятельность швов анастомозов

Inconsistency of sutures of anastomoses

2

20

-

-

Всего осложнений

Total complications

9

90

1

10*

Больные с осложнениями

Patients with complications

5

50

1

10*

Летальность

Mortality

1

10

-

-

* р<0,05 согласно критерию Пирсона (Х2) в сравнении с показателями в первой группе

В первой группе осложнения развились у 5(50%) больных. Ушивание раны толстой кишки нитью без антимикробного покрытия привело к несостоятельности шва у 2(20%) больных. У этих же больных произошло нагноение операционных ран с последующей эвентрацией. Оба пациента повторно оперированы. Произведено выведение колостомы вместе с несостоятельными швами толстой кишки, санация и дренирование брюшной полости. Один больной погиб от прогрессирования перитонита, второго удалось спасти. Еще у 2 больных первой группы развилось нагноение ран. Во второй группе нагноение операционных ран не зарегистрировано. Пневмония в каждой группе развилась в единичном случае, больные выздоровели.

Анализ литературных данных показал, что основной причиной несостоятельности кишечного шва в условиях перитонита является резко выраженная воспалительная реакция кишечной стенки с расстройствами микроциркуляции [9]. Чем быстрее купируется воспаление вокруг шва, тем скорее в эту область начинают мигрировать элементы соединительной ткани и защищать наложенные швы от действия инфекции [10]. В первой экспериментальной группе выраженная воспалительная фаза раневого процесса продолжалась в течение 7-и суток, стихание фазы воспаления и начало фазы пролиферации вокруг шовного материала зарегистрировано лишь на 14-е сутки эксперимента. Только к концу 3-е недели шовный материал начал окружаться элементами соединительной ткани ,а воспалительный процесс полностью купировался. Течение раневого процесса во второй экспериментальной группе при ушивании раны кишки материалом с антимикробным покрытием значительно отличалось от такового в первой группе. Во- первых, фаза воспаления была менее выражена и ее продолжительность ограничивалась тремя сутками. Во -вторых, фаза пролиферации заканчивалась на 7-е сутки, и отграничивала кишечные швы от действия инфекции. Полное восстановление архитектоники кишки завершалось на 14-е сутки эксперимента.

Результаты проведенного экспериментального исследования позволили применить шовный материал импрегнированный мирамистином в клинической практике. Анализ клинического исследования продемонстрировал эффективность нового антимикробного покрытия как при ушивании ран кишечника, так и при закрытии лапаротомной раны: случаев несостоятельности кишечного шва и нагноения операционных ран не зарегистрировано.

Вывод. Применение шовного материала, импрегнированного мирамистином, позволяет в 2 раза сократить воспалительную фазу раневого процесса в стенке кишки, избежать несостоятельности кишечного шва и нагноения операционных ран.

Дополнительная информация.

Конфликт интересов. Авторы декларируют отсутствие явных и потенциальных конфликтов интересов, связанных с публикацией настоящей статьи.

Финансирование. Работа выполнена в соответствии с планом научных исследований Курского государственного медицинского университета. Финансовой поддержки со стороны компаний-производителей медицинского назначения авторы не получали.

Одобрение комитета по этике. Положительное заключение на экспериментально-клиническое исследование регионального этического комитета Курского государственного медицинского университета получено 05.03.2018, протокол №2.

 

×

Об авторах

Борис Семенович Суковатых

Курский государственный медицинский университет

Email: SukovatykhBS@kursksmu.net
ORCID iD: 0000-0003-2197-8756

профессор, д.м.н., заведующий кафедрой общей хирургии Курского государственного медицинского университета

Россия, Курск, Российская Федерация

Анастасия Викторовна Мосолова

Курский государственный медицинский университет

Email: mosolovaav@kursksmu.net

ассистент кафедры общей хирургии, Курский государственный медицинский университет

Россия, Курск, Россия

Мария Алексеевна Затолокина

Курский государственный медицинский университет

Email: zatolokinama@kursksmu.net
ORCID iD: 0000-0002-9553-1597

д.м.н., профессор кафедры гистологии, эмбриологии, цитологии, Курский государственный медицинский университет

Россия, Курск, Россия

Александр Анатольевич Дубонос

ОБУЗ ГКБ СМП г. Курска

Email: sukovatykhbs@kursksmu.net

к.м.н., заведующий отделением общей хирургии ОБУЗ ГКБ СМП г. Курска

Россия, Курск, Россия

Валерий Александрович Жуковский

ООО «Линтекс», г. Санкт-Петербург

Email: rdd.lintex@gmail.com

д.т.н., директор по развитию ООО «Линтекс», г. Санкт-Петербург

Россия, Санкт-Петербург, Россия

Татьяна Юрьевна Анущенко

ООО «Линтекс», г. Санкт-Петербург

Автор, ответственный за переписку.
Email: ATU0106@yandex.ru

инженер-технолог ООО «Линтекс», г. Санкт-Петербург

Россия, Санкт-Петербург, Россия

Список литературы

  1. Горский В.А., Агапов М.А., Климов А.Е., Андреев С.С. Проблема несостоятельности кишечного шва. Практическая медицина. 2014; 81(5):33-37.
  2. Vakalopoulos KA, Daams F, Wu Z, Timmermans L, Jeekel JJ, Kleinrensink GJ, van der Ham A, Lange JF. Tissue adhesives in gastrointestinal anastomosis: a systematic review. J. Surg. Res. 2013;180(2):290-300.
  3. Мохов Е.М., Сергеев А.М. Имплантационная антимикробная профилактика инфекции области хирургического вмешательства. Сибирское медицинское обозрение. 2017; 105(3):75-81.
  4. McCagherty J, Yool DA, Paterson GK. Investigation of the in vitro antimicrobial activity of triclosan-coated suture material on bacteria commonly isolated from wounds in dogs. Am J Vet Res. 2020 Jan;81(1):84-90. doi: 10.2460/ajvr.81.1.84. PMID: 31887087.
  5. Плечева Д.В., Галимов О.В., Плечев В.В., Шикова Ю.В., Елова Е.В. Профилактика несостоятельности межкишечных анастомозов в плановой и ургентной хирургии. Вестник Национального медико-хирургического центра им. Н.И. Пирогова. 2018; 13(3): 47-49.
  6. Морозов А.М., Мохов Е.М., Любский И.В., Сергеев А.Н., Кадыков В.А., Аскеров В.М., Пельтихина О.В., Хорак К.И. Возможности разработки нового биологически активного материала в хирургии. Вестник экспериментальной и клинической хирургии. 2019; 12(3):193-198.
  7. Данилова Т.А., Данилова Г.А., Аджиева А.А. Влияние мирамистина и фоспренила на микробные пленки. Бюллетень экспериментальной биологии и медицины. 2017; 163(4): 435-439.
  8. Блинков Ю.Ю., Липатов В.А., Суковатых Б.С., Ештокин С.А., Костин С.В., Беседин А. В., Окунев О.А., Ефременков А.М., Зайцев О.В., Ненахов А. А., Скориков Д. В., Стародубцева Е. В. Патент №2338265 Российская Федерация. Способ моделирования острого перитонита № 2007119763/14: Заявитель и патентообладатель – Курский государственный медицинский университет. заявл. 28.05.2007.
  9. Семенюта А.А., Гольдберг О.А., Лепехова С.А., Новожилов В.А., Степанова Н.М., Милюкова Л.П. Морфологические особенности формирования кишечного анастомоза с помощью различных видов кишечного шва в эксперименте. Российский вестник детской хирургии, анестезиологии и реаниматологии. 2017; 7(3):46-53.
  10. Фахрадиев И.Р., Алмабаев Ы.А., Гералиева Л.Т., Куандыков Е.К., Салимгереева Б.Ж., Герментаева Ж.М., Какетаева И.З., Ткаченко Н.Л., Ждумахаева А.А. Морфофункциональные изменения кишечных анастомозов. Вестник Казахского национального медицинского университета. 2018; 2: 23-25.

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML

© Суковатых Б.С., Мосолова А.В., Затолокина М.А., Дубонос А.А., Жуковский В.А., Анущенко Т.Ю., 2021

Creative Commons License
Эта статья доступна по лицензии Creative Commons Attribution-NonCommercial-NoDerivatives 4.0 International License.

Данный сайт использует cookie-файлы

Продолжая использовать наш сайт, вы даете согласие на обработку файлов cookie, которые обеспечивают правильную работу сайта.

О куки-файлах