Анестезия и анальгезия у лабораторных крыс. Применяемые комбинации препаратов, их влияние на организм животного, оптимальные решения для преодоления побочных эффектов
- Авторы: Матвеев Н.Л.1,2, Куприянова А.С.1,2, Армашов В.П.1,2, Ефимова И.В.1,3, Лосева В.В.1, Лысцева А.В.1
-
Учреждения:
- Российский национальный исследовательский медицинский университет имени Н.И. Пирогова
- Московский клинический научный центр имени А.С. Логинова
- Центр доклинических исследований
- Выпуск: Том 18, № 2 (2025)
- Страницы: 166-175
- Раздел: Обзор литературы
- URL: https://vestnik-surgery.com/journal/article/view/1801
- DOI: https://doi.org/10.18499/2070-478X-2025-18-2-166-175
- ID: 1801
Цитировать
Полный текст



Аннотация
На данный момент большой объем исследований, в том числе включающих оперативное вмешательство, производится на экспериментальных моделях, многие из которых демонстрируют патологический процесс на крысах. В связи с этим существует потребность в эффективных и регулируемых по времени методах анестезии и анальгезии, применимых к выбранной группе животных, с последующей оценкой анатомо-физиологических последствий выбранной комбинации. Имеющиеся варианты общей анестезии распределены в широком диапазоне по характеру влияния, времени действия, процессу послеоперационного восстановления в рамках конкретных экспериментальных моделей. Это делает актуальным поиск наиболее эффективных и безопасных лекарственных средств. В статье рассмотрены принципы проведения наркоза у экспериментальных животных (крыс), а также наиболее распространенные лекарственные препараты, среди которых присутствуют изофлуран, комбинация кетамин-ксилазин и другие сочетания кетамина, описано действие комбинации медетомидина, мидазолама и буторфанола, действие фенобарбитала натрия и использование хлоралозы. Все вышеуказанные препараты применяются для анестезии и анальгезии при выполнении оперативных вмешательств в рамках экспериментальных моделей, при этом на организм животного они оказывают не только анестезирующее и анальгезирующее действия, но и вызывают изменения ряда физиологических функций, включая работу сердца, мозга и органов дыхания, что является ключевым фактором ухудшения процесса восстановления животных в послеоперационном периоде или их гибели в процессе эксперимента.
Полный текст

Об авторах
Николай Львович Матвеев
Российский национальный исследовательский медицинский университет имени Н.И. Пирогова; Московский клинический научный центр имени А.С. Логинова
Автор, ответственный за переписку.
Email: n.l.matveev@gmail.com
д.м.н., профессор, заведующий кафедрой экспериментальной и клинической хирургии медико-биологического факультета; хирург отделения общей хирургии
Россия, Москва; МоскваАлина Сергеевна Куприянова
Российский национальный исследовательский медицинский университет имени Н.И. Пирогова; Московский клинический научный центр имени А.С. Логинова
Email: almalisa07@gmail.com
ассистент кафедры экспериментальной и клинической хирургии медико-биологического факультета; хирург отделения общей хирургии
Россия, Москва; МоскваВадим Петрович Армашов
Российский национальный исследовательский медицинский университет имени Н.И. Пирогова; Московский клинический научный центр имени А.С. Логинова
Email: armashovvp@mail.ru
к.м.н., доцент кафедры экспериментальной и клинической хирургии медико-биологического факультета; старший научный сотрудник отделения высокотехнологичной хирургии и хирургической эндоскопии, хирург отделения общей хирургии
Россия, Москва; МоскваИрина Викторовна Ефимова
Российский национальный исследовательский медицинский университет имени Н.И. Пирогова; Центр доклинических исследований
Email: 3198789@mail.ru
инженер Передовой инженерной школы; директор
Россия, Москва; ПензаВалерия Владимировна Лосева
Российский национальный исследовательский медицинский университет имени Н.И. Пирогова
Email: valeria_0315@mail.ru
студентка медико-биологического факультета
Россия, МоскваАлександра Васильевна Лысцева
Российский национальный исследовательский медицинский университет имени Н.И. Пирогова
Email: aleksandra.lyst@gmail.com
студентка медико-биологического факультета
Россия, МоскваСписок литературы
- Steiner AR, Rousseau-Blass F, Schroeter A, Hartnack S, Bettschart-Wolfensberger R. Systematic Review: Anesthetic Protocols and Management as Confounders in Rodent Blood Oxygen Level Dependent Functional Magnetic Resonance Imaging (BOLD fMRI)-Part B: Effects of Anesthetic Agents, Doses and Timing. Animals (Basel). 2021; 11: 199. doi: 10.3390/ani11010199
- Diana P, Joksimovic SM, Faisant A, Jevtovic-Todorovic V. Early exposure to general anesthesia impairs social and emotional development in rats. Mol Neurobiol. 2020; 57: 41-50. doi: 10.1007/s12035-019-01755-x
- Liu Y, Fu HQ, Wu Y, Du ZS, Li BR, Gao X, Lin GW, Yang SY, Wang TL. Influence of three different anesthesia protocols on aged rat brain: a resting-state functional magnetic resonance imaging study. Chin Med J (Engl). 2020; 134: 344-352. doi: 10.1097/CM9.0000000000001126
- Farag A, Mandour AS, Hendawy H, Elhaieg A, Elfadadny A, Tanaka R. A review on experimental surgical models and anesthetic protocols of heart failure in rats. Front Vet Sci. 2023; 10. doi: 10.3389/fvets.2023.1103229
- Farag A, Mandour AS, Hamabe L, Yoshida T, Shimada K, Tanaka R. Novel protocol to establish the myocardial infarction model in rats using a combination of medetomidine-midazolam-butorphanol (MMB) and atipamezole. Front Vet Sci. 2022; 9. doi: 10.3389/fvets.2022.1064836
- Pawela CP, Biswal BB, Hudetz AG, Schulte ML, Li R, Jones SR, Cho YR, Matloub HS, Hyde JS. A protocol for use of medetomidine anesthesia in rats for extended studies using task-induced bold contrast and resting-state functional connectivity. Neuroimage. 2009; 46: 1137–1147.
- Chao THH, Chen JH, Yen CT. Repeated bold-fmri imaging of deep brain stimulation responses in rats. PLoS ONE. 2014; 9.
- 8. Ochiai Y, Baba A, Hiramatsu M, Toyota N, Watanabe T, Yamashita K. Blood biochemistry and hematological changes in rats after administration of a mixture of three anesthetic agents. J Vet Med Sci. 2018; 80: 387–394. doi: 10.1292/jvms.17-0497
- Sorrenti V, Cecchetto C, Maschietto M, Fortinguerra S, Buriani A, Vassanelli S. Understanding the Effects of Anesthesia on Cortical Electrophysiological Recordings: A Scoping Review. Int J Mol Sci. 2021; 22. doi: 10.3390/ijms22031286
- Caetano J, Alves JD. Heart rate and cardiovascular protection. Eur J Int Med. 2015; 26: 217-222. doi: 10.1016/j.ejim.2015.02.009
- Svorc P, Svorc P Jr. General anesthesia and electrocardiographic parameters in in vivo experiments involving rats. Physiol Res. 2022; 71: 177-192. doi: 10.33549/physiolres.934848
- Sajovic J, Trandafilović M, Drevenšek G, Kužner J, Drevenšek M. Frequently applied ketamine, medetomidine and thiopental anaesthesia induces high mortality in Wistar rats. Eur Rev Med Pharmacol Sci. 2022; 26: 158-167. doi: 10.26355/eurrev_202201_27765
- Mechelinck M, Kupp C, Krüger JC, Habigt MA, Helmedag MJ, Tolba RH, Rossaint R, Hein M. Oxygen inhalation improves postoperative survival in ketamine-xylazine anaesthetised rats: An observational study. PLoS One. 2019; 14. doi: 10.1371/journal.pone.0226430
- Albrecht M, Henke J, Tacke S, Markert M, Guth B. Influence of repeated anesthesia on physiological parameters in male Wistar rats: a telemetric study about isoflurane, ketamine-xylazine and a combination of medetomidine, midazolam and fentanyl. BMC Vet Res. 2014; 10: 310. doi: 10.1186/s12917-014-0310-8
- Livingston A, Waterman A. The development of tolerance to ketamine in rats and the significance of hepatic metabolism. Br. J. Pharmacol. 1978; 64: 63–69.
- Furuyama F, Murakami M, Oiwa T, Nishino H. Differences in Thermal Salivation between the FOK Rat (a Model of Genotypic Heat Adaptation) and Three Other Rat Strains. Physiol Behav. 1998; 63: 787-793.
- Klemcke HG, Calderon ML, Crimmins SL, Ryan KL, Xiang L, Hinojosa-Laborde C. Effects of ketamine analgesia on cardiorespiratory responses and survival to trauma and hemorrhage in rats. J Appl Physiol. 2021; 130: 1583-1593. doi: 10.1152/japplphysiol.00476.2020
- Li C, Peng J, Hu R, Yan J, Sun Y, Zhang L, Liu W, Jiang H. Safety and Efficacy of Ketamine Versus Ketamine-Fentanyl-Dexmedetomidine Combination for Anesthesia and Analgesia in Rats. Dose Response. 2019; 17. doi: 10.1177/1559325819825902
- Zhou X, Li W, Wang H, Li C, Jiang H. Safety and Efficacy of Ketamine-Fentanyl-Dexmedetomidine-Induced Anesthesia and Analgesia in Neonatal and Aged Rats. Dose Response. 2021; 19. doi: 10.1177/15593258211063987
- Silverman J, Muir WW 3rd. A review of laboratory animal anesthesia with chloral hydrate and chloralose. Lab Anim Sci. 1993; 43: 210-216.
- Paasonen J, Salo RA, Huttunen JK, Gröhn O. Resting-state functional mri as a tool for evaluating brain hemodynamic responsiveness to external stimuli in rats. Magnet. Reason. Med. 2016; 78: 1136–1146.
- Flecknell P. Laboratory Animal Anaesthesia. Academic Press: Cambridge. MA. USA. 2015.
Дополнительные файлы
