Исследование гемопоэтических стволовых клеток у больных с обширными ожогами

  • Авторы: Козлова М.Н.1, Земсков В.М.2, Алексеев А.А.2,3, Демидова В.С.2, Шишкина Н.С.2, Куликова А.Н.2, Земсков А.М.4, Бобровников А.Э.2,3
  • Учреждения:
    1. Федеральное государственное бюджетное учреждение «Национальный медицинский исследовательский центр хирургии имени А. В. Вишневского» Министерства здравоохранения Российской Федерации
    2. Федеральное государственное бюджетное учреждение «Национальный медицинский исследовательский центр хирургии имени А. В. Вишневского» Министерства здравоохранения Российской Федерации, Москва, Россия
    3. Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение дополнительного профессионального образования «Российская медицинская академия непрерывного профессионального образования» Министерства здравоохранения Российской Федерации, Москва, Россия
    4. Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Воронежский государственный медицинский университет имени Н. Н. Бурденко" Министерства здравоохранения Российской Федерации, Воронеж, Россия
  • Выпуск: Том 15, № 4 (2022)
  • Страницы: 300-305
  • Раздел: Оригинальные статьи
  • URL: https://vestnik-surgery.com/journal/article/view/1638
  • DOI: https://doi.org/10.18499/2070-478X-2022-15-4-300-305
  • ID: 1638

Цитировать

Полный текст

Аннотация

Обоснование: Одним из важных направлений в комплексном лечении больных с обширными ожогами является оценка тканевой регенерации, в том числе на клеточном и субклеточном уровне. Известно, что  гемопоэтические стволовые клетки (ГСК) способствуют восстановлению и регенерации тканей через паракринные эффекты или прямую клеточную дифференцировку, являются центральным компонентом восстановления послеожоговой анемии и способны образовывать не только клетки крови, но и другие типы клеток. Причем анализ этих клеток при ожоговой травме   совершенно не изучен. 

Цель: исследование в динамике содержания гемопоэтических стволовых клеток разных фенотипов у пациентов с обширными ожогами в процессе комплексного лечения. Методы: анализ гемопоэтических стволовых клеток и их субпопуляций в образцах периферической крови выполняли  на проточном цитофлуориметре FACSCalibur (Becton Dickinson, CША) с использованием программы CellQuest и панелей  моноклональных антител CD45/CD34/CD38 и CD45/CD34/CD133 (BD, CША). Статистический анализ полученных результатов проводили с помощью программы GraphPad Prism 7.0 (США), достоверные результаты учтены при р<0,05.

Результаты: исследование гемопоэтических стволовых клеток   и их субпопуляций  выполнено на разных этапах комплексного лечения у 25 больных с обширной площадью ожогового поражения более 30% поверхности тела. Группу сравнения составили 15 здоровых добровольцев. При поступлении в Ожоговый центр у группы тяжелообожженных пациентов выявлен достоверный  глубокий дефицит как  общих ГСК  CD45+34+ (р=0,0002) так и их субпопуляций CD45dim34+38+ (р=0,019), причем  преимущественно ранних предшественников гемопоэза CD45dim34+38-  (р=0,0001) и CD45dim34+133+ (р=0,0002). В процессе комплексного лечения, включая хирургическую некрэктомию и аутодермопластику ожоговых ран, на 20 сутки лечения в группе ожоговых больных отмечена нормализация  общих ГСК CD45+34+ (0,05±0,012%, p=0,031) и субпопуляции ранних ГСК CD45dim34+38- (0,039±0,009%, p=0,016). Произошло достоверное возрастание в процессе лечения зрелых ГСК  CD45dim34+133- (p=0,0380), при этом дефицит  более дифференцированной популяции ГСК CD45dim34+38+ восстановился не полностью (р=0,272).

Заключение: впервые выявленные модуляции содержания гемопоэтических стволовых клеток разных фенотипов у пациентов с обширными ожогами могут отражать состояние компенсаторно-приспособительных реакций гемопоэза в процессе комплексного лечения. Полученные данные могут подтверждать предиктивное использование субклеточных маркеров ГСК для оценки регенераторного потенциала при заживлении ожоговых ран, в том числе в процессе этапного хирургического лечения и аутодермопластики, прогноза развития местных и общих осложнений ожоговой болезни.

Полный текст

Гемопоэтические стволовые клетки (ГСК) относительно малочисленны, их содержание в костном мозге колеблется в районе  0.01-0.15% от всех ядерных клеток. В первую очередь ГСК отвечают за пополнение всех клеточных компонентов крови, в том числе лейкоцитов, эритроцитов и тромбоцитов, а также являются одним из центральных компонентов регенерации тканей [1, 2, 3]. ГСК способны к мобилизации из костного мозга в кровоток после различных травм, в том числе после инфаркта миокарда, инсульта, поражения печени и ожогов кожи [4, 5, 6]. То, что ГСК обладают специфическим хоумингом в поврежденные ткани, в том числе обожженные, способствуют восстановлению и регенерации тканей через паракринные эффекты или прямую дифференцировку, являются центральным компонентом восстановления послеожоговой анемии и способны образовывать не только клетки крови, но и другие типы клеток, анализ этих клеток при ожогах представляется крайне важным в плане изучения новых механизмов патогенеза ожоговой болезни и оценки регенераторного потенциала у тяжелообожженных, тем более, что в предварительных исследованиях нам удалось установить их количественную модификацию при ожогах [7].

В периферической крови ГСК выделяют из общей массы на основе экспрессии определенных антигенов на поверхности клетки с использованием моноклональных антител против панлейкоцитарного антигена CD45 и маркера ранних клеток-предшественников CD34. Антиген CD34 - является общепризнанным маркером стволовых клеток крови человека и представляет собой мембранный белок, молекулу межклеточной адгезии, играющую роль на ранних этапах кроветворения [8]. Кроме того, предполагается  роль белка CD34 в участии мобилизации гемопоэтических клеток, предотвращении активации интегринов, содействии пролиферации гемопоэтических клеток-предшественников и адгезии лимфоцитов к эндотелию сосудов с помощью связывания с L-селектином, дополняя и улучшая клеточную адгезию в целом [9]. В кроветворной ткани существуют пути взаимного превращения CD34- клеток в CD34+. При этом обе фракции могут поступать как в периферическую кровь из костного мозга, так и мигрировать обратно [10, 11].

Для анализа ГСК используют также антитела против активационного антигена CD38, в том числе в комбинации с комплексными антителами к фенотипам. CD38 - мультифункциональный мембранный поверхностный гликопротеин, который экспрессируется различными клетками на определенных этапах их развития. Кроме того, определена его роль в процессе адгезии лимфоцитов к эндотелию сосудов. В качестве трансмембранного рецептора CD38 может передавать как положительные, так и отрицательные сигналы, регулирующие пролиферацию и дифференцировку Т- и В –лимфоцитов [7]. Внеклеточная часть молекулы CD38 функционирует как фермент, который катализирует синтез и гидролиз циклической АДФ-рибозы, которая недавно была идентифицирована как мощный Са2+ мобилизирующий агент. Ферментные функции CD38, вероятно, имеют иммунорегуляторное значение. Молодые стволовые кроветворные клетки человека не имеют кластера дифференцировки CD38, в то время как зрелые клеточные формы его уже содержат. В качестве основного фенотипа ГСК человека рассматривается комбинация CD45dimCD34+CD38- [12]. Помимо «классических» маркеров ГСК в последние годы возрастает интерес к исследованию новых антигенов. На поверхности ГСК человека установлено наличие нового кластера дифференцировки CD133, который экспрессируется на большинстве CD34+ клеток и не определяется уже на поздних прогениторных кроветворных клетках [13].

Цель

Исследование в динамике содержания гемопоэтических стволовых клеток разных фенотипов у пациентов с обширными ожогами в процессе комплексного лечения.

Материалы и методы

Исследование гемопоэтических стволовых клеток разных фенотипов выполнено у 25 пациентов с обширными ожогами двукратно: при поступлении в Ожоговый центр НМИЦ хирургии им А.В. Вишневского (на 1-15 сутки после травмы) и через 20 дней комплексного лечения. Специализированное комплексное лечение пациентам проводилось в палате интенсивной терапии и в палате ожогового отделения с применением противоожоговых (флюидизирующих) кроватей, включающее круглосуточное мониторирование гемодинамики и волемического статуса, осуществлялась лабораторная и инструментальная диагностика и лечение осложнений ожоговой болезни, нутритивная поддержка. По показаниям - респираторная поддержка с применением аппаратов искусственной вентиляции легких, экстракорпоральное воздействие на кровь с применением аппаратов ультрагемофильтрации и плазмафереза,  местное медикаментозное лечение ожоговых ран с использованием современных раневых покрытий, хирургическая некрэктомия и кожная пластика для закрытия ран. Площадь ожогового поражения на этапе поступления пациентов составила 44,0±4,7 % поверхности тела (п.т.), возраст больных 42,4 ± 4,7 года.  В группу сравнения включили 15 здоровых добровольцев в возрасте  33,9±4,7 лет с целью  определения референсных показателей субпопуляций ГСК для последующего сравнительного анализа их содержания у пациентов. По гендерным показателям и возрасту группы достоверно не различались (р = 0,22).

Образцы периферической венозной крови собирали в пробирки с ЭДТА в количестве 2,7 мл. В работе были использованы моноклональные антитела CD45 PerCP-Cy5.5 (клон HI30, BD Biosciences, США), CD34 FITC (клон 581, BD Biosciences, США), CD38 РЕ (клон HIT2, BD Biosciences, США), CD133/1(AC133) PE (клон AC133, Miltenyi Biotec GmbH, Германия). Для анализа субпопуляций ГСК использовали трехцветные панели CD45/CD34/CD38 и CD45/CD34/CD133, для чего смешивали по 5 мкл соответствующих моноклональных антител и 100 мкл цельной крови с экспозицией 20 минут при 4° С, далее добавляли 1000 мкл лизирующего раствора BD FACS Lysing solution (BD Biosciences, США) и после лизиса эритроцитов выполняли фенотипирование субпопуляций ГСК в подготовленных пробах на проточном цитометре FACSCalibur (Becton Dickinson, США) с использованием программы CellQuest. При подсчете собирали не менее 5×105 клеток, пересчет ГСК проводили в % от числа клеток лимфоцитарного полигона. Статистический анализ выполняли с помощью программы GraphPad Prism 7.0 (США). Данные приведены в виде медиана ± стандартная ошибка (Mean±SEM), статистическая значимость рассчитана по критерию Манна - Уитни при p < 0,05.    

Результаты

При исследовании циркулирующих ГСК у здоровых лиц определены средние количественные показатели в % различных популяций стволовых клеток крови  (табл. 1) для последующего сравнительного анализа содержания ГСК у больных с обширными ожогами на разных этапах комплексного лечения. 

Таблица 1. Содержание популяций ГСК у здоровых добровольцев

Популяции ГСК Здоровые добровольцы (n=15),%  
 
CD45+34+ 0,048±0,005 
CD45dim34+38-0,031± 0,003 
CD45dim34+38+ 0,017±0,003 
CD45dim34+133 -0,017±0,003 
CD45dim34+133+0,032±0,004 

 

Table 1. Content of HSC populations in healthy volunteers

HSC populationsHealthy volunteers (n=15),%  
 
CD45+34+ 0,048±0,005 
CD45dim34+38-0,031± 0,003 
CD45dim34+38+ 0,017±0,003 
CD45dim34+133 -0,017±0,003 
CD45dim34+133+0,032±0,004 

 

У исследуемой группы тяжелообожженных пациентов в сравнении с группой здоровых добровольцев при поступлении в Ожоговый центр выявлен достоверный  глубокий дефицит в периферической крови общих гемопоэтических клеток  CD45+34+ (0,022±0,003 %, р=0,0002), который восстановился в процессе лечения (0,05± 0,012 %, р=0,0307) (рис. 1).

Рис. 1. Динамика относительного количества общих ГСК CD45+34в крови  пациентов с ожогами в процессе комплексного лечения

Figure. 1. The dynamics of the relative amount of the total HSC CD45+ 34+ in the blood of patients with burns in the process of complex treatment

На гистограммах приведены примеры визуальной оценки содержания ГСК у пациентов с нормальным уровнем ГСК (рис.2) и при их фактически полном отсутствии (рис. 3).

Рис. 2. Пример гистограммы с нормальным содержанием общих ГСК (CD45+34+)

Fig. 2. An example of a histogram with the normal content of the general HSC (CD45+34+)

Рис. 3. Пример гистограммы с дефицитом содержания общих ГСК (СD45+34+)

Fig. 3. An example of a histogram with a deficiency of general HSC (CD45+34+)

 

Надо отметить, что восстановление уровня общих ГСК происходило быстрее у пациентов, которым удалось провести этапное хирургическое лечение ожоговых ран в более ранние сроки ожоговой болезни при отсутствии гнойно-септических осложнений.

При изучении содержания у тяжелообоженных пациентов различных субпопуляций ГСК, отражающих в том числе  репаративные процессы в очагах ожогового поражения, при поступлении также выявлен дефицит CD45dim34+38+ клеток (р=0,0188), причем преимущественно основного фенотипа ГСК CD45dim34+38- (р=0,0001) и ранних предшественников гемопоэза CD45dim34+133+ (р=0,0002) (табл. 2), что может свидетельствовать о подавлении компенсаторно-приспособительных реакций гемопоэза на этапах поступления больных в тяжелом клиническом состоянии, когда еще не применен весь необходимый комплекс лечебных мероприятий, направленных в первую очередь на компенсацию и протекцию жизненно-важных функций и внутренних констант организма, коррекцию интоксикационного синдрома, профилактику инвазивной раневой инфекции, в т.ч. методы хирургического воздействия на первичные очаги ожогового поражения.

В процессе комплексного лечения на 20-е сутки у больных с тяжелыми ожогами отмечается достоверное повышение (до уровня здоровых лиц) основной субпопуляции ГСК CD45dim34+38- (0,039± 0,009%,  р=0,0155). При этом дефицит популяций CD45dim34+38+ и CD45dim34+133+ восстановился не полностью (табл. 2).

Таблица 2. Содержание субпопуляций ГСК у здоровых лиц и пациентов с ожогами в динамике

 

Популяции ГСКЗдоровые добровольцы (n=15)Пациенты с ожогами (n=25)
при поступлении Mean±SEMРна 20 сутки лечения Mean±SEMР
CD45dim34+38- %0,031± 0,0030,013±0,0020,0001#0,039± 0,0090,0155*
CD45dim34+38+ %0,017±0,0030,007± 0,0020,0188#0,012±0,0040,2721
CD45dim34+133- %0,017±0,0030,010± 0,0030,07850,028± 0,0080,0380*
CD45dim34+133+ %0,032±0,0040,011± 0,0030,0002#0,020± 0,0060,1879

 

Обозначения: # -  достоверные различия между группой здоровых добровольцев и ожоговыми пациентами при поступлении; * достоверные различия между группами пациентов  при поступлении и на фоне лечения

 

Table 2. The content of HSC subpopulations in healthy individuals and patients with burns in dynamics

HSC populationsHealthy volunteers (n=15)Patients with burns (n=25)
on admission Mean±SEMРon 20 days of treatment Mean±SEMР
CD45dim34+38- %0,031± 0,0030,013±0,0020,0001#0,039± 0,0090,0155*
CD45dim34+38+ %0,017±0,0030,007± 0,0020,0188#0,012±0,0040,2721
CD45dim34+133- %0,017±0,0030,010± 0,0030,07850,028± 0,0080,0380*
CD45dim34+133+ %0,032±0,0040,011± 0,0030,0002#0,020± 0,0060,1879

 

Designations: # - reliable differences between a group of healthy volunteers and burn patients upon admission; * reliable differences between groups of patients upon admission and against the background of treatment

В популяции CD45dim34+133- отмечено достоверное возрастание в процессе лечения этих клеток в сравнении с исходным периодом, когда их уровень не отличался от группы здоровых лиц.

Обсуждение

Выраженный дефицит содержания общих ГСК и их ранних и зрелых субпопуляций может быть обусловлен обширной и тяжелой термической травмой с подавлением регенераторного потенциала этих клеток и возможной усиленной миграцией из периферической крови в область ожоговых ран при поступлении в ожоговый центр, когда еще не начат весь комплекс специализированной хирургической и высокотехнологичной медицинской помощи пострадавшим от ожогов, в целом направленной на восстановление общего гомеостаза и органной дисфункции, снижение эндогенной интоксикации организма и предупреждение инвазивной раневой инфекции, в том числе за счет своевременного этапного хирургического удаления некротизированных тканей и ожогового струпа, для подготовки к аутодермопластике по закрытию ожоговых ран.

Заключение

Результаты показывают, что у пациентов при благоприятном течении ожоговой болезни нивелируется глубокий дефицит ГСК в процессе адекватного комплексного лечения и активируются тканевые регенераторные процессы.  В то же время, у части пациентов с вялыми грануляциями и медленным заживлением ран, лизисом аутодермотрансплантатов мы наблюдали стойкое исчезновение некоторых субпопуляций ГСК, что может обусловливаться истощением пула этих клеток или их токсическим повреждением. Полученные данные могут подтверждать предиктивное использование данных маркеров для прогноза развития осложнений ожоговой болезни и заживления ожогов. Во всяком случае, выявленные модуляции содержания ГСК при ожогах обнаружены впервые, они имеют большое фундаментальное значение и требуют дальнейшего анализа по мере накопления клинического материала и выявления причин такой модуляции.

×

Об авторах

Мария Николаевна Козлова

Федеральное государственное бюджетное учреждение «Национальный медицинский исследовательский центр хирургии имени А. В. Вишневского» Министерства здравоохранения Российской Федерации

Email: mnkozlova@rambler.ru
ORCID iD: 0000-0002-0554-7094
SPIN-код: 7631-8050
Scopus Author ID: 57194480001

кандидат медицинских наук, старший научный сотрудник клинико-диагностической лаборатории

Россия, 117997, Россия, Москва, улица Б. Серпуховская, 27

Владимир Михайлович Земсков

Федеральное государственное бюджетное учреждение «Национальный медицинский исследовательский центр хирургии имени А. В. Вишневского» Министерства здравоохранения Российской Федерации, Москва, Россия

Email: arturrego@yandex.ru
ORCID iD: 0000-0002-8867-5349
SPIN-код: 7754-0336
Scopus Author ID: 7103049738

доктор медицинских наук, профессор, главный научный сотрудник клинико-диагностической лаборатории

Россия, 117997, Россия, Москва, улица Б. Серпуховская, 27

Андрей Анатольевич Алексеев

Федеральное государственное бюджетное учреждение «Национальный медицинский исследовательский центр хирургии имени А. В. Вишневского» Министерства здравоохранения Российской Федерации, Москва, Россия;
Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение дополнительного профессионального образования «Российская медицинская академия непрерывного профессионального образования» Министерства здравоохранения Российской Федерации, Москва, Россия

Email: alexseev@ixv.ru
ORCID iD: 0000-0001-6675-4794
SPIN-код: 4803-3939
Scopus Author ID: 720289106

Доктор медицинских наук, профессор, заместитель директора ФГБУ «НМИЦ хирургии им. А.В. Вишневского» Минздрава России

Россия, 117997, Россия, Москва, улица Б. Серпуховская, 27

Валентина Семеновна Демидова

Федеральное государственное бюджетное учреждение «Национальный медицинский исследовательский центр хирургии имени А. В. Вишневского» Министерства здравоохранения Российской Федерации, Москва, Россия

Email: demidova@ixv.ru
ORCID iD: 0000-0003-3187-4408
SPIN-код: 5611-4653
Scopus Author ID: 56977389500

доктор биологических наук, заведующий клинико-диагностической лаборатории

Россия, 117997, Россия, Москва, улица Б. Серпуховская, 27

Надежда Семеновна Шишкина

Федеральное государственное бюджетное учреждение «Национальный медицинский исследовательский центр хирургии имени А. В. Вишневского» Министерства здравоохранения Российской Федерации, Москва, Россия

Email: nadya-vesy@mail.ru
ORCID iD: 0000-0002-0600-6038
SPIN-код: 9773-1960
Scopus Author ID: 57194481862

младший научный сотрудник клинико-диагностической лаборатории

Россия, 117997, Россия, Москва, улица Б. Серпуховская, 27

Анна Николаевна Куликова

Федеральное государственное бюджетное учреждение «Национальный медицинский исследовательский центр хирургии имени А. В. Вишневского» Министерства здравоохранения Российской Федерации, Москва, Россия

Email: shinshila72@mail.ru
ORCID iD: 0000-0001-5514-5600
SPIN-код: 6535-0560

врач клинико-диагностической лаборатории

Россия, 117997, Россия, Москва, улица Б. Серпуховская, 27

Андрей Михайлович Земсков

Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Воронежский государственный медицинский университет имени Н. Н. Бурденко" Министерства здравоохранения Российской Федерации, Воронеж, Россия

Email: zemskov@vsmaburdenko.ru
ORCID iD: 0000-0001-6725-4361

д.м.н., профессор, заведующий кафедрой микробиологии

Россия, Воронеж, Студенческая, 10

Александр Эдуардович Бобровников

Федеральное государственное бюджетное учреждение «Национальный медицинский исследовательский центр хирургии имени А. В. Вишневского» Министерства здравоохранения Российской Федерации, Москва, Россия;
Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение дополнительного профессионального образования «Российская медицинская академия непрерывного профессионального образования» Министерства здравоохранения Российской Федерации, Москва, Россия

Автор, ответственный за переписку.
Email: doctorbobr@mail.ru
ORCID iD: 0000-0003-0926-6115
SPIN-код: 4203-1718
Scopus Author ID: 6602689492

Доктор медицинских наук, доцент, заведующий ожоговым отделением

Россия, 117997, Россия, Москва, улица Б. Серпуховская, 27

Список литературы

  1. Ястребов А.П., Гребнев Д.Ю., Маклакова И.Ю. Стволовые клетки, их свойства, источники получения и роль в регенеративной медицине. Екатеринбург. 2016; 282.
  2. Ярыгин К.Н. Роль резидентных и циркулирующих стволовых клеток в физиологической и репаративной регенерации. Патологическая физиология и экспериментальная терапия. 2008; 1: 2-7.
  3. Юшков Б.Г., Данилова И.Г., Козакова И.А. Роль стволовых клеток в регенерации печени и почек. Вестник уральской медицинской академической науки. 2013; 1: 43: 46-48.
  4. Baker KS, Bhatia S, Bunin N, Nieder M, Dvorak CC, Sung L …, et al. NCI, NHLBI first international consensus conference on late effects after pediatric hematopoietic cell transplantation: state of the science, future directions. Biol Blood Marrow Transplant. 2011; 17: 1424-1427. DOI: 10.1016 / j.bbmt.2011.06.007
  5. Armenian SH, Sun CL, Vase T, Ness КК, Blum E, Francisco L …, et al. Cardiovascular risk factors in hematopoietic cell transplantation survivors: role in development of subsequent cardiovascular disease. Blood. 2012; 120: 4505-4512. doi: 10.1182/blood-2012-06-437178
  6. Kida A, McDonald GB. Gastrointestinal, hepatobiliary, pancreatic, and ironrelated diseases in longterm survivors of allogeneic hematopoietic cell transplantation. Seminars in hematology. 2012; 49: 1: 43-58. doi: 10.1053/j.seminhematol.2011.10.006
  7. Zemskov VM, Pronko KN, Kozlova MN, Barsukov AА, Shishkina NS, Alekseyev AА. Overview of stem cells and their research in burn patients. International Journal of Current Research. 2018; 10: 01: 64731-64736.
  8. Brandt JE, Srour EF, Besien K, Hoffman R. Characterization of human hematopoietic stem cells. Prog Clin Biol Res. 1990; 352: 29-36.
  9. Kuçi S, Wessels JT, Bühring HJ, Schilbach K, Schumm M, Seitz G. Identification of a novel class of human adherent CD34-stem cells that give rise to SCI repopulating cells. Blood. 2003; 101: 3: 869-876. doi: 10.1182/blood-2002-03-0711
  10. Sutherland DR, Stewart AK, Keating A. CD34 antigen: molecular features and potential clinical applications. Stem Cells. 1993; 3: 50-57. doi: 10.1002/stem.5530110914
  11. Gallacher L, Murdoch B, Wu DM, Karanu FN, Keeney M, Bhatia M. Isolation and characterization of human CD34(-)Lin(-) and CD34(+)Lin(-) hematopoietic stem cells using cell surface markers AC133 and CD7. Blood. 2000; 95: 9: 2813–2820.
  12. Wang TY, Chang SJ, Chang MD, Wang HW. Unique biological properties and application potentials of CD34+ CD38- stem cells from various sources. Taiwan J Obstet Gynecol. 2009; 48: 356-369. doi: 10.1016/S1028-4559(09)60324-7
  13. Pfenninger CV, Roschupkina T, Hertwig F, Kottwitz D, Englund E, Bengzon J. CD133 is not present on neurogenic astrocytes in the adult subventricular zone, but on embryonic neural stem cells, ependymal cells and glioblastoma cells. Cancer Research. 2007; 67: 12: 5727- 5736. doi: 10.1158/0008-5472.CAN-07-0183

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML

© Козлова М.Н., Земсков В.М., Алексеев А.А., Демидова В.С., Шишкина Н.С., Куликова А.Н., Земсков А.М., Бобровников А.Э., 2022

Creative Commons License
Эта статья доступна по лицензии Creative Commons Attribution-NonCommercial-NoDerivatives 4.0 International License.

Данный сайт использует cookie-файлы

Продолжая использовать наш сайт, вы даете согласие на обработку файлов cookie, которые обеспечивают правильную работу сайта.

О куки-файлах